標簽：熒光定量 PCR PCR 試劑  實時熒光定量 PCR 耗材 

所謂實時熒光定量 PCR 技術 ，是指在 PCR 反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號積累實時監測整個 PCR 進程，后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法。以下便是天津本生生物就熒光定量 PCR 原理的簡要說明，一起來看下：

檢測方法：

1.SYBRGreenⅠ法：在 PCR 反應體系中，加入過量 SYBR 熒光染料，SYBR 熒光染料特異性地摻入 DNA 雙鏈后，發射熒光信號，而不摻入鏈中的 SYBR 染料分子不會發射任何熒光信號，從而保證熒光信號的增加與 PCR 產物的增加*同步。SYBR 定量 PCR 擴增熒光曲線圖 PCR 產物熔解曲線圖 (單一峰圖表明 PCR 擴增產物的單一性)

2.TaqMan 探針法：探針完整時，報告基團發射的熒光信號被淬滅基團吸收;PCR 擴增時，Taq 酶的 5』-3』外切酶活性將探針酶切降解，使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離，從而熒光監測系統可接收到熒光信號，即每擴增一條 DNA 鏈，就有一個熒光分子形成，實現了熒光信號的累積與 PCR 產物的形成*同步。

1. 熒光閾值 (threshold) 的設定 PCR 反應的前 15 個循環的熒光信號作為熒光本底信號，熒光閾值的缺省 (默認) 設置是 3-15 個循環的熒光信號的標準偏差的 10 倍，即：threshold = 10*SDcycle 3-152. Ct 值與起始模板的關系每個模板的 Ct 值與該模板的起始拷貝數的對數存在線性關系，公式如下。Ct =-1/lg(1+Ex)*lgX0+lgN/lg(1+Ex)n 為擴增反應的循環次數，X0 為初始模板量，Ex 為擴增效率，N 為熒光擴增信號達到閾值強度時擴增產物的量。起始拷貝數越多，Ct 值越小。利用已知起始拷貝數的標準品可作出標準曲線，其中橫坐標代表起始拷貝數的對數，縱坐標代 Ct 值。因此，只要獲得未知樣品的 Ct 值，即可從標準曲線上計算出該樣品的起始拷貝數。

實時熒光定量 PCR 所使用的熒光物質可分為兩種：

1. TaqMan 熒光探針：PCR 擴增時在加入一對引物的同時加入一個特異性的熒光探針，該探針為一寡核苷酸，兩端分別標記一個報告熒光基團和一個淬滅熒光基團。探針完整時，報告基團發射的熒光信號被淬滅基團吸收;PCR 擴增時，Taq 酶的 5'-3' 外切酶活性將探針酶切降解，使報告熒光基團和淬滅熒光基團分離，從而熒光監測系統可接收到熒光信號，即每擴增一條 DNA 鏈，就有一個熒光分子形成，實現了熒光信號的累積與 PCR 產物形成*同步。而新型 TaqMan-MGB 探針使該技術既可進行基因定量分析，又可分析基因突變 (SNP)，有望成為基因診斷和個體化用藥分析的當選技術平臺。

2. SYBR 熒光染料：在 PCR 反應體系中，加入過量 SYBR 熒光染料，SYBR 熒光染料非特異性地摻入 DNA 雙鏈后，發射熒光信號，而不摻入鏈中的 SYBR 染料分子不會發射任何熒光信號，從而保證熒光信號的增加與 PCR 產物的增加*同步。SYBR 僅與雙鏈 DNA 進行結合，因此可以通過溶解曲線，確定 PCR 反應是否特異。

3. 分子信標：是一種在 5 和 3 末端自身形成一個 8 個堿基左右的發夾結構的莖環雙標記寡核苷酸探針，兩端的核酸序列互補配對，導致熒光基團與淬滅基團緊緊靠近，不會產生熒光。PCR 產物生成后，退火過程中，分子信標中間部分與特定 DNA 序列配對，熒光基因與淬滅基因分離產生熒光 。

1. 傳統定量 PCR 方法簡介：

1) 內參照法：在不同的 PCR 反應管中加入已定量的內標和引物，內標用基因工程方法合成。上游引物用熒光標記，下游引物不標記。在模板擴增的同時，內標也被擴增。在 PCR 產物中，由于內標與靶模板的長度不同，二者的擴增產物可用電泳或高效液相分離開來，分別測定其熒光強度，以內標為對照定量待檢測模板。

2) 競爭法：選擇由突變克隆產生的含有一個新內切位點的外源競爭性模板。在同一反應管中，待測樣品與競爭模板用同一對引物同時擴增 (其中一個引物為熒光標記)。擴增后用內切酶消化 PCR 產物，競爭性模板的產物被酶解為兩個片段，而待測模板不被酶切，可通過電泳或高效液相將兩種產物分開，分別測定熒光強度，根據已知模板推測未知模板的起始拷貝數。3)PCR-ELISA 法：利用 digaoxin 或生物素等標記引物，擴增產物被固相板上特異的探針所結合，再加入抗 digaoxin 或生物素酶標抗體-辣根過氧化物酶結合物，終酶使底物顯色。常規的 PCR-ELISA 法只是定性實驗，若加入內標，作出標準曲線，也可實現定量檢測目的。

2. 內標在傳統定量中的作用由于傳統定量方法都是終點檢測，即 PCR 到達平臺期后進行檢測，而 PCR 經過對數期擴增到達平臺期時，檢測重現性極差。同一個模板在 96 孔 PCR 儀上做 96 次重復實驗，所得結果有很大差異，因此無法直接從終點產物量推算出起始模板量。加入內標后，可部分消除終產物定量所造成的不準確性。但即使如此，傳統的定量方法也都只能算作半定量、粗略定量的方法。

3. 內標對定量 PCR 的影響若在待測樣品中加入已知起始拷貝數的內標，則 PCR 反應變為雙重 PCR，雙重 PCR 反應中存在兩種模板之間的干擾和競爭，尤其當兩種模板的起始拷貝數相差比較大時，這種競爭會表現得更為顯著。但由于待測樣品的起始拷貝數是未知的，所以無法加入合適數量的已知模板作為內標。也正是這個原因，傳統定量方法雖然加入內標，但仍然只是一種半定量的方法。 實時熒光定量 PCR 技術有效地解決了傳統定量只能終點檢測的局限，實現了每一輪循環均檢測一次熒光信號的強度，并記錄在電腦軟件之中，通過對每個樣品 Ct 值的計算，根據標準曲線獲得定量結果。

因此，實時熒光定量 PCR 無需內標是建立在兩個基礎之上的：

1)Ct 值的重現性 PCR 循環在到達 Ct 值所在的循環數時，剛剛進入真正的指數擴增期 (對數期)，此時微小誤差尚未放大，因此 Ct 值的重現性*，即同一模板不同時間擴增或同一時間不同管內擴增，得到的 Ct 值是恒定的。

2)Ct 值與起始模板的線性關系由于 Ct 值與起始模板的對數存在線性關系，可利用標準曲線對未知樣品進行定量測定，因此，實時熒光定量 PCR 是一種采用外標準曲線定量的方法。外標準曲線的定量方法相比內標法是一種準確的、值得信賴的科學方法。利用外標準曲線的實時熒光定量 PCR 是迄今為止定量準確，重現性的定量方法，已得到*的*，廣泛用于基因表達研究、轉基因研究，藥物療效考核、病原體檢測等諸多領域。 各級各類醫療機構、大學及研究所、CDC、檢驗檢疫局、獸醫站、食品企業及乳品廠等。由于 qPCR 是實時定量檢測致病病原體基因核酸，因此它比化學發光、時間分辨、蛋白芯片等免疫學方法更具獨到優 

產品優勢：
本生生物代理實驗室耗材,PCR 耗材品種全，可替代儀器原廠耗材，性價比高，質量穩定，對用戶可以節省實驗成本。

適應客戶：
醫院檢驗科 PCR 實驗室，中心實驗室，肝病中心；第三方檢測機構，科研院所，大專院校，制藥廠，試劑生產廠家，疾控中心，檢驗檢疫。

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